心律失常可在整个动物中繁殖,或通过离体灌注离体心脏或心脏的特定部位进行体外灌注,具体取决于各种实验目的。*常用的复制方法是:
1、房扑和颤动性心律失常
选择狗,猫和其他动物,麻醉后张开胸腔,暴露心脏,并在机械通气下进行实验。高频电可用于直接刺激心房壁,因此,如果在每次刺激过程中使心房肌重新极化,则R波或S波会分离。乌头碱溶液被应用于心房的外部。它压缩上腔静脉和下腔静脉,并同时提供电刺激。将乙酰胆碱或甲状腺素制剂注入心房结节动脉。或者,在关闭胸部的情况下,使用动物阻塞呼吸道或吸入低氧气体。分离的心房组织块也可用于实验,将哺乳动物的分离的心房组织块(包括窦房结)浸入低钾溶液中。
2、室性心动过速和心室纤颤性心律失常主要用于对狗,猫,兔子,大鼠等的整个心脏(开胸或封闭)进行实验。常用的造型药物是乌头碱,洋地黄和肾上腺素。通常,乌头碱缓慢地静脉内注射。剂量:兔子100-150μg/ kg,大鼠30-50 mg/kg,小鼠5 mg/kg。您还可以使用有毒的洋地黄造型。高浓度的肾上腺素(豚鼠为40μg/ kg,猫和狗为100μg/ kg)也可以用于快速静脉注射,这可能导致动物多发性心脏收缩和短期心室性心动过速。这样的模型可以用于筛选抗心律不齐药物。优点是心律不齐在几分钟之内自发消失,可以重复测试同一只动物的心律不齐。这对于观察抗心律不齐药物作用的持续时间和自我控制很有用。
3、房室传导阻滞和房室交界处的传导性心律失常主要选择猫和狗,胸腔张开以暴露心脏,左心室心肌离狗的心尖1.5-2 cm,将热生理学注入10-15毫升生理盐水(80-90°C)或95%酒精和25%硫酸(向猫和兔子注射4-7毫升)可导致大心肌局部坏死,可引起性心律失常。也有可能在狗的房室交界处(即,在左下心房,心房和下腔静脉的交点上方约0.5 cm处)用针刺穿房间隔下方的房室。向结节区域缓慢注入2-5 ml的95%或无水酒精,导致核组织坏死。豚鼠也可用于从左心耳向左心房注射5μg腺苷。注射后约1秒,出现典型的Ⅱ度或更高的传导阻滞。在更严重的情况下,房室骤停是完整的。停机时间与剂量之间存在平行关系,心率和心律可以在几秒钟或10秒内恢复。尽管该模型是可重现的,但它的传导阻滞持续时间短,并且不易于用于药物观察。注射大量腺苷并不容易恢复传导阻滞。除豚鼠外,腺苷通常不会引起其他动物的传导阻滞。
4、使用窦性心律不齐
公兔,将细钢丝变成直径约0.8厘米的半环,并用小棉垫包裹。渗入40%甲醛后,将环放在上腔静脉根和右心房的交界处1分钟。这些动物立即显示出心电图的变化,其心率下降了约50%。它在大约6-8分钟内降至*低水平。 P波在一两分钟内几乎消失,形成临界的心律。在3-10分钟内,发生ST段的运动范围(先上升,下降或上升,然后下降);当ECG改变时,伴随着动脉压的下降。分钟数已降至*低水平。该方法具有很高的窦房结综合征成功率,持续时间(长达5小时),高可重复性,稳定的模型以及与临床类似的病因和ECG性能。